ДЕРИНАТ ДЛЯ ДЕТЕЙ отрицательные и реальные отзывы
4
Отзыв рекомендуют:
Всем доброго времени суток!Деринат не является привычными каплями, которые борются с вирусами или прочими бациллами, это иммуномодулятор, который вроде бы как подталкивает активизирует иммунитет бороться с гадостью самостоятельно, так сказать волшебный пендаль.Сам Деринат мне врач не…
Достоинства: помогает
Недостатки: нет
27 августа 2013
Отзыв рекомендуют:
Вот и я наконец-то решилась написать свой отзыв об этом, как по мне, так замечательном препарате. Когда моя доченька в первый раз в жизни приболела, я купила капли Деринат, уж больно их все очень хвалили. Позже я уже выяснила, что их можно капать как в целях лечения, так и для…
Достоинства: Поддерживают иммунитет, помогает при болезнях
Недостатки: нет
4 сентября 2015
Отзыв рекомендуют:
Я считаю что если препарат хороший и реально помогает , поэтому и решила обязательно написать отзыв, ведь когда не знаешь чем спасать своего ребенка от болячки,ищешь любые мнения о том или ином лекарстве.
Достоинства: Эффективность, и результат в лечении.
Недостатки: нет
17 сентября 2014
Отзыв рекомендуют:
Деринатом я лечила гайморит в комплексном лечении. Три раза в день делала турунды и смачивала их в деринате. Потом засовывала их в каждую ноздрю и лежала в течение 20 минут. Так я делала в течение 10 дней, но ничего не поняла. Столько денег угрохала , а толку нет. В одном флаконе 10 мл и…
Достоинства: нет.
Недостатки: нет эффекта.
16 декабря 2015
Отзыв рекомендуют:
Опять зима. Вот сижу… думаю-гадаю как ребенка защитить от наплыва вирусов , надоело болеть. Уже сил нет, вместо того, чтобы пойти поиграть на улицу с детьми мы дома, болеем . Летом не успели побыть на море, всего два дня, у нас кашель хриплый и ручей сопель. Пришлось уехать, никакого…
Достоинства: эффективен
Недостатки: нет
5 октября 2014
Отзыв рекомендуют:
С деринатом я познакомился уже много лет назад.
До сих пор препарат не разочаровал меня. В моей семье он используется в первую очередь по следующим направлениям: любые простуды, ОРВИ и т.д. Сразу начинаем частые закапывания в нос. Обычно каждый час-полтора. такой режим позволяет в…
Достоинства: эффективный, быстро действующий, не вызывающий побочных эффектов, простой в применении.
Недостатки: Если открыл флакон, то в течение месяца надо его весь истратить. ПО сравнению с таблетками, нет экономии. Но обычно его используешь до конца — 10 мл.
22 декабря 2013
Отзыв рекомендуют:
На очередном приеме врача, моему ребенку прописали для профилактики простудных заболеваний, ОРВИ и прочего, иммуномоделирующий препарат Деринат. Врач очень хорошо отзывалась о нем : и полностью безопасный, и эффективный, не антибиотик, не дорогой… хорош со всех сторон. Я поверила и…
Достоинства: насморк и заложенность носа убирает, не щиплет слизистую, удобная пипетка, недорогой, экономичный
Недостатки: не заметила иммуномоделирующего эффекта как у себя, так и у ребенка
19 октября 2015
Москва
Отзыв рекомендуют:
С Деринатом мне приходилось сталкиваться многократно.
Так как у нас есть маленький ребенок и конечно как все маленькие детки мы периодически болеем различными ОРВИ и ОРЗ и приходится использовать Деринат в качестве профилактики и для лечения. Первый раз это лекарство нам выписал наш…
Достоинства: удобно капать ребенку, можно с раннего возраста, дейсвует быстро
Недостатки: нет
27 ноября 2014
Отзыв рекомендуют:
Когда дочь в возрасте 2-х лет впервые заболела ОРЗ педиатр посоветовала капать ей в носик капли Деринат. Сказала, что они здорово поднимают иммунитет и сокращают вдвое срок болезни, а еще, чтобы малышка не болела их можно капать для профилактикиКупила я Деринат во флакончике со…
Достоинства: Нет
Недостатки: Нет эффекта, дорого
24 ноября 2017
Москва
Отзыв рекомендуют:
К сожалению, от болезни не застрахован никто, ни взрослые, ни дети. Но в лечении у взрослых есть несомненный плюс: круг выбора лекарст шире, мы умеем высмаркивать нос и пить таблетки (маленькие дети не умеют глотать, давятся).
Достоинства: убивает вирусы, повышает иммунитет, без осложнений.
Недостатки: маленький флакон.
27 сентября 2018
Отзыв рекомендуют:
В прошлом месяца впервые для ребенка купила препарат «деринат» в капельках. Муж с работы пришел с насморком, чихал, смотрю, на следующий день и ребенок как бы начинает заболевать, вялый, чихает, глазки потирает. Начала капать капли «деринат», так как было указано в инструкции, в…
Достоинства: помог не заболеть
Недостатки: я не нашла
22 января 2018
Отзыв рекомендуют:
Всем доброго времени суток и доброго здравия=))) пришел и мой черед написать о деринате. Пока у меня не было сынули, для себя я такие капли не покупала, так ть ть о здоровье особо не думаешь. Но вот с появлением детей начинаешь для себя «открывать» препараты один за другим). До полгода…
Достоинства: хорошо помогают при орви
Недостатки: минусов не заметила
13 декабря 2017
Отзыв рекомендуют:
О «деринате» узнала от сотрудницы из соседнего отдела на работе.
Достоинства: помогает
Недостатки: небольшой срок хранения
25 октября 2017
Отзыв рекомендуют:
С конца августа как мы пошли в детский сад, сын болел за это время три раза и постоянно с жуткими соплями. И честно скажу, я так устала его лечить и скажите мне, какого работодателя устроит то, что сотрудник постоянно отпрашивается домой сидеть с больным ребенком. Обратилась к нашему…
Достоинства: помогает быстрее справиться с простудой и насморком, без осложнений и ослабления иммунитета
Недостатки: флакон маловат
7 декабря 2017
Отзыв рекомендуют:
Всем доброго времени суток! Деринат нам прописала наш педиатр, когда мы заболели гриппом. Текли сопли ручьем и сильный сухой кашель был. На второй пришел врачи долго думала что нам такого хорошего дать.
В итоге вердикт Деринат. Очень рада что она нам его прописала. Помог сразу же в…
Достоинства: Помогает с первого применения.
Недостатки: Не нашли.
15 марта 2018
Отзыв рекомендуют:
Про деринат я узнала случайно, как говорят «не было бы счастья, да несчастье помогло». Как и все дети, мой ребенок в садике периодически болел, но после выписки я не спешила его туда отводить, еще недельку-другую сидели дома, чтобы окреп. Благо работа моя позволяет, поскольку работаю…
Достоинства: эффективный, с ним сын реже болеет
Недостатки: храниться в холодильнике
Протективные эффекты препарата нуклеотидной природы “Деринат” на течение и клеточные механизмы черепно-мозговой травмы в эксперименте | Корнева
1. Aisiku I.P., Yamal J.M., Doshi P., Benoit J.S., Gopinath S., Goodman J.C., Robertson C.S. Plasma cytokines IL-6, IL-8, and IL-10 are associated with the development of acute respiratory distress syndrome in patients with severe traumatic brain injury.
Crit. Care., 2016, Vol. 20, 288. doi: 10.1186/s13054-016-1470-7.
2. Armstead W.M., Bohman L.E., Riley J., Yarovoi S., Higazi A.A., Cines D.B. tPA-S(481)A prevents impairment of cerebrovascular autoregulation by endogenous tPA after traumatic brain injury by upregulating p38 MAPK and inhibiting ET-1. J. Neurotrauma, 2013, Vol. 30, no. 22, pp. 1898-1907.
3. Armstead W.M., Kiessling J.W., Riley J., Cines D.B., Higazi A.A. tPA contributes to impaired NMDA cerebrovasodilation after traumatic brain injury through activation of JNK MAPK. Neurol. Res., 2011, Vol. 33, no. 7, pp. 726-733.
4. Armstead W.M., Riley J., Yarovoi S., Cines D.B., Smith D.H., Higazi A.A. tPA-S481A prevents neurotoxicity of endogenous tPA in traumatic brain injury. J. Neurotrauma, 2012, Vol. 29, no. 9, 1794-1802.
5. Başkaya M.K., Doğan A., Temiz C., Dempsey R.J. Application of 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride staining to evaluate injury volume after controlled cortical impact brain injury: role of brain edema in evolution of injury volume.
J. Neurotrauma, 2000, Vol. 17, no. 1, pp. 93-99.
6. Benedek A., Móricz K., Jurányi Z., Gigler G., Lévay G., Hársing L.G. Jr., Mátyus P., Szénási G., Albert M. Use of TTC staining for the evaluation of tissue injury in the early phases of reperfusion after focal cerebral ischemia in rats. Brain Res., 2006, Vol. 1116, no. 1, pp. 159-165.
7. Beppu K., Kosai Y., Kido M.A., Akimoto N., Mori Y., Kojima Y., Fujita K., Okuno Y., Yamakawa Y., Ifuku M., Shinagawa R., Nabekura J., Sprengel R., Noda M. Expression, subunit composition, and function of AMPA-type glutamate receptors are changed in activated microglia; possible contribution of GluA2 (GluR-B)-deficiency under pathological conditions. Glia, 2013, Vol. 61, no. 6, pp. 881-891.
8. Blennow K., Brody D.L., Kochanek P.M., Levin H., McKee A., Ribbers G.M., Yaffe K., Zetterberg H. Traumatic brain injuries. Nat. Rev. Dis. Primers, 2016, Vol. 2, 16084. doi: 10.1038/nrdp.2016.84.
9. Cantu D., Walker K., Andresen L., Taylor-Weiner A.
, Hampton D., Tesco G., Dulla C.G. Traumatic brain injury increases cortical glutamate network activity by compromising GABAergic control. Cereb. Cortex, 2015, Vol. 25, no. 8, pp. 2306-2320.
10. Chen X., Chen C., Fan S., Wu S., Yang F., Fang Z., Fu H., Li Y. Omega-3 polyunsaturated fatty acid attenuates the inflammatory response by modulating microglia polarization through SIRT1-mediated deacetylation of the HMGB1/NF-κB pathway following experimental traumatic brain injury. J. Neuroinflammation, 2018, Vol. 15, no. 1, 116. doi: 10.1186/s12974-018-1151-3.
11. Cheong C.U., Chang C.P., Chao C.M., Cheng B.C., Yang C.Z., Chio C.C. Etanercept attenuates traumatic brain injury in rats by reducing brain TNF-α contents and by stimulating newly formed neurogenesis. Mediators Inflamm., 2013, Vol. 2013, 620837. doi: 10.1155/2013/620837.
12. Chio C.C., Lin M.T., Chang C.P. Microglial activation as a compelling target for treating acute traumatic brain injury. Curr. Med. Chem., 2015, Vol.
22, no. 6, pp. 759-770.
13. Chiu C.C., Liao Y.E., Yang L.Y., Wang J.Y., Tweedie D., Karnati H.K., Greig N.H., Wang J.Y. Neuroinflammation in animal models of traumatic brain injury. J. Neurosci. Methods, 2016, Vol. 272, pp. 38-49.
14. Clark D.P.Q., Perreau V.M., Shultz S.R., Brady R.D., Lei E., Dixit S., Taylor J.M., Beart P.M., Boon W.C. Inflammation in Traumatic Brain Injury: Roles for toxic A1 astrocytes and microglial-astrocytic crosstalk. Neurochem. Res., 2019, Vol. 44, no. 6, pp. 1410-1424.
15. Corrigan F., Mander K.A., Leonard A.V., Vink R. Neurogenic inflammation after traumatic brain injury and its potentiation of classical inflammation. J. Neuroinflammation, 2016, Vol. 13, no. 1, 264. doi: 10.1186/s12974-016-0738-9.
16. Cotrina M.L., Chen M., Han X., Iliff J., Ren Z., Sun W., Hagemann T., Goldman J., Messing A., Nedergaard M. Effects of traumatic brain injury on reactive astrogliosis and seizures in mouse models of Alexander disease. Brain Res., 2014, Vol.
1582, pp. 211-219.
17. Dalla Libera A.L., Regner A., de Paoli J., Centenaro L., Martins T.T., Simon D. IL-6 polymorphism associated with fatal outcome in patients with severe traumatic brain injury. Brain Inj., 2011, Vol. 25, no. 4, pp. 365-936.
18. Daoud H., Alharfi I., Alhelali I., Charyk Stewart T., Qasem H., Fraser D.D. Brain injury biomarkers as outcome predictors in pediatric severe traumatic brain injury. Neurocrit. Care, 2014, Vol. 20, no. 3, pp. 427-435.
19. Davalos D., Grutzendler J., Yang G., Kim J.V., Zuo Y., Jung S., Littman D.R., Dustin M.L., Gan W.B. ATP mediates rapid microglial response to local brain injury in vivo. Nat. Neurosci., 2005, Vol. 8, no. 6, pp. 752-758.
20. Dmitrienko E.V., Filatenkova T.A., Rybakina E.G., Korneva E.A. Behavioral reactions of animals after experimental traumatic brain injury: Effects of the nucleotide drug nature. Bulletin of St. Petersburg University, 2014, Vol. 11, no. 3, pp. 180-191.
21. Du G., Zhao Z., Chen Y.
, Li Z., Tian Y., Liu Z., Liu B., Song J. Quercetin protects rat cortical neurons against traumatic brain injury. Mol. Med. Rep., 2018, Vol. 17, no. 6, pp. 7859-7865.
22. Finan J.D. Biomechanical simulation of traumatic brain injury in the rat. Clin. Biomech., 2019, Vol. 64, pp. 114-121.
23. Fomicheva E.E., Filatenkova T.A., Shanin S.N., Rybakina E.G. Stress-induced changes in the functional activity of the neuroendocrine system: the modulatory activity of derinat. Neurosci. Behav. Physiol., 2010, Vol. 40, no. 4, pp. 397-401.
24. Fujita K., Seike T., Yutsudo N., Ohno M., Yamada H., Yamaguchi H., Sakumi K., Yamakawa Y., Kido M.A., Takaki A., Katafuchi T., Tanaka Y., Nakabeppu Y., Noda M. Hydrogen in drinking water reduces dopaminergic neuronal loss in the 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine mouse model of Parkinson’s disease. PLoS One, 2009, Vol. 4, no. 9, e7247. doi: 10.1371/journal.pone.0007247.
25. Gatson J.W., Liu M.M., Abdelfattah K., Wigginton J.G., Smith S.
, Wolf S., Minei J.P. Resveratrol decreases inflammation in the brain of mice with mild traumatic brain injury. J. Trauma Acute Care Surg., 2013, Vol. 74, no. 2, pp. 470-475.
26. Ghajar J. Traumatic brain injury. Lancet, 2000, Vol. 356, no. 9233, pp. 923-929.
27. Grummisch J.A., Jadavji N.M., Smith P.D. tPA promotes cortical neuron survival via mTOR-dependent mechanisms. Mol. Cell. Neurosci., 2016, Vol. 74, pp. 25-33.
28. Hagino Y., Kariura Y., Manago Y., Amano T., Wang B., Sekiguchi M., Nishikawa K., Aoki S., Wada K., Noda M. Heterogeneity and potentiation of AMPA type of glutamate receptors in rat cultured microglia. Glia, 2004, Vol. 47, no. 1, pp. 68-77.
29. Hanlon L.A., Raghupathi R., Huh J.W. Depletion of microglia immediately following traumatic brain injury in the pediatric rat: Implications for cellular and behavioral pathology. Exp. Neurol., 2019, Vol. 316, pp. 39-51.
30. Harvey L.D., Yin Y., Attarwala I.Y., Begum G., Deng J., Yan H.Q., Dixon C.E., Sun D.
Administration of DHA reduces endoplasmic reticulum stress-associated inflammation and alters microglial or macrophage activation in traumatic brain injury. ASN Neuro, 2015, Vol. 7, no. 6, 1759091415618969. doi: 10.1177/1759091415618969.
31. Henry R.J., Ritzel R.M., Barrett J.P., Doran S.J., Jiao Y., Leach J.B., Szeto G.L., Wu J., Stoica B.A., Faden A.I., Loane D.J. Microglial depletion with CSF1R inhibitor during chronic phase of experimental traumatic brain injury reduces neurodegeneration and neurological deficits. J. Neurosci., 2020, Vol. 40, no. 14, pp. 2960-2974.
32. Hide I., Tanaka M., Inoue A., Nakajima K., Kohsaka S., Inoue K., Nakata Y. Extracellular ATP triggers tumor necrosis factor-alpha release from rat microglia. J. Neurochem., 2000, Vol. 75, no. 3, pp. 965-972.
33. Hijazi N., Abu Fanne R., Abramovitch R., Yarovoi S., Higazi M., Abdeen S., Basheer M., Maraga E., Cines D.B., Higazi A.A. Endogenous plasminogen activators mediate progressive intracerebral hemorrhage after traumatic brain injury in mice.
Blood, 2015, Vol. 125, no. 16, pp. 2558-2567.
34. Hsu W.L., Lu J.H., Noda M., Wu C.Y., Liu J.D., Sakakibara M., Tsai M.H., Yu H.S., Lin M.W., Huang Y.B., Yan S.J., Yoshioka T. Derinat protects skin against utraviolet-B (UVB)-induced cellular damage. Molecules, 2015, Vol. 20, no. 11, pp. 20297-20311.
35. Hu B.Y., Liu X.J., Qiang R., Jiang Z.L., Xu L.H., Wang G.H., Li X., Peng B. Treatment with ginseng total saponins improves the neurorestoration of rat after traumatic brain injury. J. Ethnopharmacol., 2014, Vol. 155, no. 2, pp. 1243-1255.
36. Imai Y., Ibata I., Ito D., Ohsawa K., Kohsaka S. A novel gene iba1 in the major histocompatibility complex class III region encoding an EF hand protein expressed in a monocytic lineage. Biochem. Biophys. Res. Commun., 1996, Vol. 224, no. 3, pp. 855-862.
37. Jassam Y.N., Izzy S., Whalen M., McGavern D.B., El Khoury J. Neuroimmunology of traumatic brain injury: time for a paradigm shift. Neuron, 2017, Vol. 95, no. 6, pp. 1246-1265.
38. Jayakumar A.R., Tong X.Y., Ruiz-Cordero R., Bregy A., Bethea J.R., Bramlett H.M., Norenberg M.D. Activation of NF-κB mediates astrocyte swelling and brain edema in traumatic brain injury. J. Neurotrauma, 2014, Vol. 31, no. 14, pp. 1249-1257.
39. Joy M.T., Ben Assayag E., Shabashov-Stone D., Liraz-Zaltsman S., Mazzitelli J., Arenas M., Abduljawad N., Kliper E., Korczyn A.D., Thareja N.S., Kesner E.L., Zhou M., Huang S., Silva T.K., Katz N., Bornstein N.M., Silva A.J., Shohami E., Carmichael S.T. CCR5 Is a therapeutic target for recovery after stroke and traumatic brain injury. Cell, 2019, Vol. 176, no. 5, pp. 1143-1157.e13.
40. Karve I.P., Taylor J.M., Crack P.J. The contribution of astrocytes and microglia to traumatic brain injury. Br. J. Pharmacol., 2016, Vol. 173, no. 4, pp. 692-702.
41. Kettenmann H., Hanisch U.K., Noda M., Verkhratsky A. Physiology of microglia. Physiol. Rev., 2011, Vol. 91, no. 2, pp. 461-553.
42. Kim E.J., Kim S.Y., Lee J.H., Kim J.
M., Kim J.S., Byun J.I., Koo B.N. Effect of isoflurane post-treatment on tPA-exaggerated brain injury in a rat ischemic stroke model. Korean J. Anesthesiol., 2015, Vol. 68, no. 3, pp. 281-286.
43. Krukowski K., Chou A., Feng X., Tiret B., Paladini M.S., Riparip L.K., Chaumeil M.M., Lemere C., Rosi S. Traumatic brain injury in aged mice induces chronic microglia activation, synapse loss, and complement-dependent memory deficits. Int. J. Mol. Sci., 2018, Vol. 19, no. 12, 3753. doi: 10.3390/ijms19123753.
44. Kumar A., Henry R.J., Stoica B.A., Loane D.J., Abulwerdi G., Bhat S.A., Faden A.I. Neutral sphingomyelinase inhibition alleviates lps-induced microglia activation and neuroinflammation after experimental traumatic brain injury. J. Pharmacol. Exp. Ther., 2019, Vol. 368, no. 3, pp. 338-352.
45. Kumar A., Stoica B.A., Loane D.J., Yang M., Abulwerdi G., Khan N., Kumar A., Thom S.R., Faden A.I. Microglial-derived microparticles mediate neuroinflammation after traumatic brain injury.
J. Neuroinflammation, 2017, Vol. 14, 47. doi: 10.1186/s12974-017-0819-4.
46. Kumar R.G., Diamond M.L., Boles J.A., Berger R.P., Tisherman S.A., Kochanek P.M., Wagner A.K. Acute CSF interleukin-6 trajectories after TBI: associations with neuroinflammation, polytrauma, and outcome. Brain Behav. Immun., 2015, Vol. 45, pp. 253-262.
47. Lee S.H., Ko H.M., Kwon K.J., Lee J., Han S.H., Han D.W., Cheong J.H., Ryu J.H., Shin C.Y. tPA regulates neurite outgrowth by phosphorylation of LRP5/6 in neural progenitor cells. Mol. Neurobiol., 2014, Vol. 49, no. 1, pp. 199-215.
48. Lewén A., Sugawara T., Gasche Y., Fujimura M., Chan P.H. Oxidative cellular damage and the reduction of APE/Ref-1 expression after experimental traumatic brain injury. Neurobiol. Dis., 2001, Vol. 8, no. 3, pp. 380-390.
49. Lin B.S., Wang C.C., Chang M.H., Chio C.C. Evaluation of traumatic brain injury by optical technique. BMC Neurol., 2015, Vol. 15, 202. doi: 10.1186/s12883-015-0465-3.
50. Lindh C.
, Wennersten A., Arnberg F., Holmin S., Mathiesen T. Differences in cell death between high and low energy brain injury in adult rats. Acta Neurochir., 2008, Vol. 150, no. 12, pp. 1269-1275.
51. Liu J., Rybakina E.G., Korneva E.A., Noda M. Effects of Derinat on ischemia-reperfusion-induced pressure ulcer mouse model. J. Pharmacol. Sci., 2018, Vol. 138, no. 2, pp. 123-130.
52. Loane D.J., Kumar A. Microglia in the TBI brain: The good, the bad, and the dysregulated. Exp. Neurol., 2016, Vol. 275, no. 3, pp. 316-327.
53. Long X., Yao X., Jiang Q., Yang Y., He X., Tian W., Zhao K., Zhang H. Astrocyte-derived exosomes enriched with miR-873a-5p inhibit neuroinflammation via microglia phenotype modulation after traumatic brain injury. J. Neuroinflammation, 2020, Vol. 17, no. 1, 89. doi: 10.1186/s12974-020-01761-0.
54. Lorente L., Martín M.M., González-Rivero A.F., Pérez-Cejas A., Abreu-González P., Ramos L., Argueso M., Cáceres J.J., Solé-Violán J., Alvarez-Castillo A., Jiménez A.
, García-Marín V. Association between DNA and RNA oxidative damage and mortality of patients with traumatic brain injury. Neurocrit. Care, 2020, Vol. 32, no. 3, pp. 790-795.
55. Lu J., Frerich J.M., Turtzo L.C., Li S., Chiang J., Yang C., Wang X., Zhang C., Wu C., Sun Z., Niu G., Zhuang Z., Brady R.O., Chen X. Histone deacetylase inhibitors are neuroprotective and preserve NGF-mediated cell survival following traumatic brain injury. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2013, Vol. 110, no. 26, pp. 10747-10752.
56. Lv Q., Lan W., Sun W., Ye R., Fan X., Ma M., Yin Q., Jiang Y., Xu G., Dai J., Guo R., Liu X. Intranasal nerve growth factor attenuates tau phosphorylation in brain after traumatic brain injury in rats. J. Neurol. Sci., 2014, Vol. 345, no. 1-2, pp. 48-55.
57. Ma J., Ni H., Rui Q., Liu H., Jiang F., Gao R., Gao Y., Li D., Chen G. Potential roles of NIX/BNIP3L pathway in rat traumatic brain injury. Cell Transplant., 2019, Vol. 28, no. 5, pp. 585-595.
58. Madathil S.
K., Carlson S.W., Brelsfoard J.M., Ye P., D’Ercole A.J., Saatman K.E. Astrocyte-specific overexpression of insulin-like growth factor-1 protects hippocampal neurons and reduces behavioral deficits following traumatic brain injury in mice. PLoS One, 2013, Vol. 8, no. 6, e67204. doi: 10.1371/journal.pone.0067204.
59. Makinde H.M., Just T.B., Gadhvi G.T., Winter D.R., Schwulst S.J. Microglia adopt longitudinal transcriptional changes after traumatic brain injury. J. Surg. Res., 2020, Vol. 246, pp. 113-122.
60. Markkanen E. Not breathing is not an option: How to deal with oxidative DNA damage. DNA Repair, 2017, Vol. 59, pp. 82-105.
61. Marklund N. Rodent models of traumatic brain injury: methods and challenges. Methods Mol. Biol., 2016, Vol. 1462, pp. 29-46.
62. Marmarou C.R., Liang X., Abidi N.H., Parveen S., Taya K., Henderson S.C., Young H.F., Filippidis A.S., Baumgarten C.M. Selective vasopressin-1a receptor antagonist prevents brain edema, reduces astrocytic cell swelling and GFAP, V1aR and AQP4 expression after focal traumatic brain injury.
Brain Res., 2014, Vol. 1581, pp. 89-102.
63. McKee A.C., Robinson M.E. Military-related traumatic brain injury and neurodegeneration. Alzheimers Dementia, 2014, Vol. 10, no. 3, pp. S242-S253.
64. McMahon P.J., Panczykowski D.M., Yue J.K., Puccio A.M., Inoue T., Sorani M.D., Lingsma H.F., Maas A.I., Valadka A.B., Yuh E.L., Mukherjee P., Manley G.T., Okonkwo D.O. TRACK-TBI Investigators. Measurement of the glial fibrillary acidic protein and its breakdown products GFAP-BDP biomarker for the detection of traumatic brain injury compared to computed tomography and magnetic resonance imaging. J. Neurotrauma, 2015, Vol. 32, no. 8, pp. 527-33.
65. Medcalf R.L. The traumatic side of fibrinolysis. Blood, 2015, Vol. 125, no. 16, pp. 2457-2458.
66. Meng Y., Chopp M., Zhang Y., Liu Z., An A., Mahmood A., Xiong Y. Subacute intranasal administration of tissue plasminogen activator promotes neuroplasticity and improves functional recovery following traumatic brain injury in rats.
PLoS One, 2014, Vol. 9, no. 9, e106238. doi: 10.1371/journal.pone.0106238.
67. Mori Y., Tomonaga D., Kalashnikova A., Furuya F., Akimoto N., Ifuku M., Okuno Y., Beppu K., Fujita K., Katafuchi T., Shimura H., Churilov L.P., Noda M. Effects of 3,3’,5-triiodothyronine on microglial functions. Glia, 2015, Vol. 63, no. 5, pp. 906-920.
68. Needham E.J., Helmy A., Zanier E.R., Jones J.L., Coles A.J., Menon D.K. The immunological response to traumatic brain injury. J. Neuroimmunol., 2019, Vol. 332, pp. 112-125.
69. Nimmerjahn A., Kirchhoff F., Helmchen F. Resting microglial cells are highly dynamic surveillants of brain parenchyma in vivo. Science, 2005, Vol. 308, no. 5726, pp. 1314-1318.
70. Ohno M., Oka S., Nakabeppu Y. Quantitative analysis of oxidized guanine, 8-oxoguanine, in mitochondrial DNA by immunofluorescence method. Methods Mol. Biol., 2009, Vol. 554, pp. 199-212.
71. Ohsawa K., Kohsaka S. Dynamic motility of microglia: purinergic modulation of microglial movement in the normal and pathological brain.
Glia, 2011, Vol. 59, no. 12, pp. 1793-1799.
72. Oka S., Ohno M., Tsuchimoto D., Sakumi K., Furuichi M., Nakabeppu Y. Two distinct pathways of cell death triggered by oxidative damage to nuclear and mitochondrial DNAs. EMBO J., 2008, Vol. 27, no. 2, pp. 421-432.
73. Papa L., Silvestri S., Brophy G.M., Giordano P., Falk J.L., Braga C.F., Tan C.N., Ameli N.J., Demery J.A., Dixit N.K., Mendes M.E., Hayes R.L., Wang K.K., Robertson C.S. GFAP out-performs S100β in detecting traumatic intracranial lesions on computed tomography in trauma patients with mild traumatic brain injury and those with extracranial lesions. J. Neurotrauma, 2014, Vol. 31, no. 22, pp. 1815-1822.
74. Perri B.R., Smith D.H., Murai H., Sinson G., Saatman K.E., Raghupathi R., Bartus R.T., McIntosh T.K. Metabolic quantification of lesion volume following experimental traumatic brain injury in the rat. J. Neurotrauma, 1997, Vol. 14, no. 1, pp. 15-22.
75. Rowe R.K., Striz M., Bachstetter A.D., Van Eldik L.
J., Donohue K.D., O’Hara B.F., Lifshitz J. Diffuse brain injury induces acute post-traumatic sleep. PLoS One, 2014, Vol. 9, no. 1, e82507. doi: 10.1371/journal.pone.0082507.
76. Schober M.E., Requena D.F., Rodesch C.K. EPO improved neurologic outcome in rat pups late after traumatic brain injury. Brain Dev., 2018, Vol. 40, no. 5, pp. 367-375.
77. Scrimgeour A.G., Condlin M.L. Nutritional treatment for traumatic brain injury. J. Neurotrauma, 2014, Vol. 31, no. 11, pp. 989-999.
78. Shen Q., Yin Y., Xia Q.J., Lin N., Wang Y.C., Liu J., Wang H.P., Lim A., Wang T.H. Bone Marrow Stromal Cells Promote Neuronal Restoration in Rats with Traumatic Brain Injury: Involvement of GDNF Regulating BAD and BAX Signaling. Cell. Physiol. Biochem., 2016, Vol. 38, no. 2, pp. 748-762.
79. Song S., Kong X., Acosta S., Sava V., Borlongan C., Sanchez-Ramos J. Granulocyte colony-stimulating factor promotes behavioral recovery in a mouse model of traumatic brain injury. J. Neurosci. Res., 2016, Vol.
94, no. 5, pp. 409-423.
80. Thal S.C., Wyschkon S., Pieter D., Engelhard K., Werner C. Selection of endogenous control genes for normalization of gene expression analysis after experimental brain trauma in mice. J. Neurotrauma, 2008, Vol. 25, no. 7, pp. 785-794.
81. Timmerman K.L., Amonette W.E., Markofski M.M., Ansinelli H.A., Gleason E.A., Rasmussen B.B., Mossberg K.A. Blunted IL-6 and IL-10 response to maximal aerobic exercise in patients with traumatic brain injury. Eur. J. Appl. Physiol., 2015, Vol. 115, no. 1, pp. 111-118.
82. Tobinick E., Kim N.M., Reyzin G., Rodriguez-Romanacce H., DePuy V. Selective TNF inhibition for chronic stroke and traumatic brain injury: an observational study involving 629 consecutive patients treated with perispinal etanercept. CNS Drugs, 2012, Vol. 26, no. 12, pp. 1051-1070.
83. Tuttolomondo A., Pecoraro R., Pinto A. Studies of selective TNF inhibitors in the treatment of brain injury from stroke and trauma: a review of the evidence to date.
Drug Des. Devel. Ther., 2014, Vol. 8, pp. 2221-2238.
84. Wang Y., Chen D., Chen G. Hyperbaric oxygen therapy applied research in traumatic brain injury: from mechanisms to clinical investigation. Med. Gas. Res., 2014, Vol. 4, 18. doi: 10.1186/2045-9912-4-18.
85. Wang Y., Yue X., Kiesewetter D.O., Niu G., Teng G., Chen X. PET imaging of neuroinflammation in a rat traumatic brain injury model with radiolabeled TSPO ligand DPA-714. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging, 2014, Vol. 41, no. 7, pp. 1440-1449.
86. Willis E.F., MacDonald K.P.A., Nguyen Q.H., Garrido A.L., Gillespie E.R., Harley S.B.R., Bartlett P.F., Schroder W.A., Yates A.G., Anthony D.C., Rose-John S., Ruitenberg M.J., Vukovic J. Repopulating microglia promote brain repair in an IL-6-dependent manner. Cell, 2020, Vol.180, no. 5, pp. 833-846.e16.
87. Witcher K.G., Bray C.E., Dziabis J.E., McKim D.B., Benner B.N., Rowe R.K., Kokiko-Cochran O.N., Popovich P.G., Lifshitz J., Eiferman D.S., Godbout J.P. Traumatic brain injury-induced neuronal damage in the somatosensory cortex causes formation of rod-shaped microglia that promote astrogliosis and persistent neuroinflammation.
Glia, 2018, Vol. 66, no. 12, pp. 2719-2736.
88. Xing P., Ma K., Li L., Wang D., Hu G., Long W. The protection effect and mechanism of hyperbaric oxygen therapy in rat brain with traumatic injury. Acta Cir. Bras., 2018, Vol. 33, no. 4, pp. 341-353.
89. Xu B., Yu D.M., Liu F.S. Effect of siRNA-induced inhibition of IL-6 expression in rat cerebral gliocytes on cerebral edema following traumatic brain injury. Mol. Med. Rep., 2014, Vol. 10, no. 4, pp. 1863-1868.
90. Yamaguchi H., Kajitani K., Dan Y., Furuichi M., Ohno M., Sakumi K., Kang D., Nakabeppu Y. MTh2, an oxidized purine nucleoside triphosphatase, protects the dopamine neurons from oxidative damage in nucleic acids caused by 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine. Cell Death Differ., 2006, Vol. 13, no. 4, pp. 551-563.
91. Yang Y., Ye Y., Kong C., Su X., Zhang X., Bai W., He X. MiR-124 enriched exosomes promoted the M2 polarization of microglia and enhanced hippocampus neurogenesis after traumatic brain injury by inhibiting TLR4 pathway.
Neurochem. Res., 2019, Vol. 44, no. 4, pp. 811-828.
92. Younger D., Murugan M., Rama Rao K.V., Wu L.J., Chandra N. Microglia receptors in animal models of traumatic brain injury. Mol. Neurobiol., 2019, Vol. 56, no. 7, pp. 5202-5228.
93. Zhao J., Wang B., Huang T., Guo X., Yang Z., Song J., Zhang M. Glial response in early stages of traumatic brain injury. Neurosci. Lett., 2019, Vol. 708, 134335. doi: 10.1016/j.neulet.2019.134335.
94. Zhuang Y.F., Li J. Serum EGF and NGF levels of patients with brain injury and limb fracture. Asian Pac. J. Trop. Med., 2013, Vol. 6, no. 5, pp. 383-386.
Товары для младенцев и детей. Обзоры и рейтинги
Популярные товары
НОВОСТИ: Получите советы и рекомендации специалистов Зарегистрироваться
Домашнее детское питание так же может содержать мышьяк, как и купленное в магазине, показало исследование
Но есть многое, что родители могут сделать, чтобы обеспечить безопасность продуктов питания своих детей
Работают ли «натуральные» средства от насекомых?
Горячие автомобильные аварии — круглогодичная угроза для детей и домашних животных
Лучшие универсальные автокресла
Насколько безопасен Дит?
Несмотря на заверения в отношении химического вещества, опасения потребителей сохраняются.
Есть ли повод для беспокойства?
5 вещей, которые никогда бы не сделал наш эксперт по пищевой безопасности
Ответы на ваши вопросы об обезьяньей оспе
Ответы на ваши вопросы о вакцине против коронавируса и детях
Лучшие бутылки с водой для детей
Узнайте о многих функциях, которые вам нравятся
Лучшие детские велосипедные шлемы года
Лучшие Chromebook любого размера
Как снять деньги со сберегательного плана колледжа 529
Оказать влияние
FDA завершает внутреннюю проверку действий агентства, связанных с поставками детских смесей в США
Заявление FDA
- Для немедленного выпуска:
- 9Выписка 0061 От:
- Стивен М. Соломон, DVM, MPH
Директор — Центр ветеринарной медицины (январь 2017 г. — январь 2023 г.)
В мае 2022 года комиссар FDA Роберт М. Калифф, доктор медицинских наук, попросил меня провести внутреннюю проверку агентства в отношении действий агентства, связанных с многочисленными сообщениями о заболевании Cronobacter у младенцев, заводом по производству детских смесей Abbott в Стерджисе, штат Мичиган, и смешиванием Проблемы, которые привели к нехватке детских смесей.
Сегодня мы выпустили наш отчет, который является результатом информации, собранной из более чем 40 интервью с более чем 60 сотрудниками и руководителями FDA, непосредственно причастными к произошедшим событиям. В отчете основное внимание уделяется аспектам реагирования, которые входят в компетенцию агентства: другие внешние заинтересованные стороны должны учитывать другие факторы, в том числе ограниченное количество производителей детских смесей, необходимые улучшения в цепочке поставок ингредиентов и лучший контроль над распространением продукции.
Я твердо верю в непрерывное улучшение качества и в то, что мы, как чиновники общественного здравоохранения, должны постоянно оценивать, адаптировать и измерять, как мы реагируем на подобные инциденты. Хотя ограничения, обнаруженные в ходе нашей оценки, усугубляются тем, что детские смеси являются единственным источником питания для уязвимых групп населения, извлеченные уроки могут быть применены ко всему портфолио FDA.
Информация, полученная в ходе этих интервью, позволила нам определить пять основных областей потребностей с несколькими конкретными выводами, подробно описанными в отчете:
- Современные информационные технологии, обеспечивающие доступ и обмен данными в режиме реального времени для всех людей, участвующих в реагировании.
- Достаточный персонал, обучение, оборудование и регулирующие органы для выполнения миссии FDA.
- Обновлены системы реагирования на чрезвычайные ситуации, способные справляться с несколькими чрезвычайными ситуациями в области общественного здравоохранения, происходящими одновременно.
- Расширение научных знаний о Cronobacter, его распространенности и естественной среде обитания, а также о том, как это проявляется в соответствующих мерах контроля и надзора.
- Оценка отрасли по производству детских смесей, ее профилактического контроля, культуры безопасности пищевых продуктов и готовности реагировать на события.
Один из ключевых выводов наших интервью заключается в том, что не существует единого действия, объясняющего произошедшие события; скорее в отчете определяется совокупность системных уязвимостей, которые демонстрируют необходимость сосредоточиться на постоянной модернизации и инвестициях в опыт и инструменты, необходимые для лучшего прогнозирования и решения будущих проблем общественного здравоохранения в этой области.
Этот инцидент продемонстрировал необходимость комплексного многодисциплинарного подхода, включающего научную, клиническую, нутриционную, аналитическую и инспекционную экспертизу; юридические процессы; цепочки поставок и политические соображения; и ресурсы для поддержки этой междисциплинарной работы.
В отчете также указывается несколько областей, в которых FDA не хватает конкретных полномочий и ресурсов. Проще говоря, если ожидается, что FDA сделает больше, ему нужно больше. Поскольку агентство оценивает свои потребности в рабочей силе, связанные с регулированием и надзором за детскими смесями, мы рекомендуем ему использовать процесс ассигнований, чтобы обеспечить необходимые полномочия и ресурсы.
Поскольку агентство работает над выполнением рекомендаций, изложенных в отчете, я хотел бы поблагодарить сотрудников FDA, принимавших участие в процессе проверки. Их готовность участвовать в оценке последствий и откровенно говорить о возможностях улучшения системы говорит об их уровне профессионализма и приверженности как миссии агентства, так и постоянному совершенствованию в обеспечении безопасности наших продуктов питания.
Как служители общественного здравоохранения, наша приверженность защите национального продовольственного снабжения должна быть бесконечной.
Это требует постоянного тестирования и переоценки для точной настройки наших подходов к противодействию новым угрозам для общественного здравоохранения, развитию научных разработок и меняющемуся рынку.
Внедряя эти изменения, мы должны убедиться, что они решают проблемы, которые привели к нехватке безопасных и полезных продуктов питания для наших наиболее уязвимых слоев населения. Это одно из наших важнейших обязательств.
###
Boilerplate
Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов, агентство Министерства здравоохранения и социальных служб США, защищает здоровье населения, гарантируя безопасность, эффективность и защищенность лекарственных препаратов для людей и животных, вакцин и других биологических продуктов для использование человеком и медицинское оборудование. Агентство также отвечает за безопасность продуктов питания, косметики, пищевых добавок, продуктов, испускающих электронное излучение, и за регулирование табачных изделий.
